Um die Suche nach Ansprechpartnern für in Vitro-Methoden an der TiHo zu erleichtern, sind hier Arbeitsgruppen aufgeführt, die die aufgeführten Methoden in ihren Laboratorien etabliert haben.
Institut für Lebensmittelqualität und -sicherheit, Arbeitsgruppe Seeger
- Differenzierung von humanen induzierten pluripotenten Stammzellen (hiPSCs) zu unterschiedlichen neuronalen Zielzellen (z. B. Motoneuronen, sensorische Neuronen, Brain Spheres)
- Generierung von intestinalen Organoiden aus hiPSCs oder aus dem Darm verschiedener Spezies isolierter intestinaler Stammzellen
- Zellkultur von Zelllinien verschiedener Spezies
Durchführung verschiedener Tests in der Zellkultur
- Aktivitätstestung von Botulinumtoxinen in aus humanen induzierten pluripotenten Stammzellen (hiPSCs) differenzierten Motoneuronen (Western Blot, Lumineszenz-Assay)
- Zytotoxizitätstests und Zellproliferationstests (MTT, WST, LDH, …)
- Assays zur Erfassung von Enzymaktivitäten (CYP1A1, CYP2B1, …)
- Charakterisierung von Barriere-Eigenschaften in intestinalen Epithelzellen über Messung des transepithelialen Widerstandes (TEER) und über Fluoreszenz-Marker (Lucifer-Yellow) in Transwell-Inserts
- Western Blot (Spaltung von SNARE-Proteinen, HIF1-alpha Expression,...)
- Immunfluoreszenz-Färbungen (Neuronen-spezifische Marker, Marker für spezielle Zellen des intestinalen Epithels)
- RT-qPCR (Expression von Differenzierungsmarkern, Entzündungsmarkern,...)
- Durchflusszytometrie (Stammzellmarker, Differenzierungsmarker,...)
- ELISA (Zytokin-Freisetzung,...)
Ansprechpartnerin:
Prof. Bettina Seeger, Ph.D. (bettina.seeger(at)tiho-hannover.de; 0511-856-7602)
Institut für Pharmakologie, Toxikologie und Pharmazie, Arbeitsgruppe Löscher
- In-vitro-Modelle der Blut-Hirn-Schranke (BHS) verschiedener Spezies (Mensch, Maus, Ratte, Schwein), sowohl immortalisierte Zellkultur als auch Primärzellkultur.
- Kultivierung der in-vitro-BHS-Modelle im Transwell System und Untersuchung der Barriere-Eigenschaften durch die Messung der transendothelialen Resistenz (TEER) und unter Verwendung radioaktiv- oder fluoreszenzmarkierter parazellulärer Tracer
- Untersuchung der Protein- (Western Blot) und Genexpression (qPCR) und zellulären Protein-Lokalisation (Fluoreszenzmikroskopie, Live Cell Imaging, Organell-Präparation) nach Arzneimittelexposition
- Untersuchung von Mechanismen der Arzneimittelresistenz und pharmakologischen Interventionsstrategien (funktionelle Assays: Aktivitätsmessung des Arzneimitteltransporters P-Glykoprotein, Transportuntersuchungen über die BHS)
- Isolation von Hirnkapillaren aus Gewebe
Ansprechpartner:
Prof. Dr. Wolfgang Löscher (wolfgang.loescher(at)tiho-hannover.de; Tel. 0511-953-8729)
Institut für Pharmakologie, Toxikologie und Pharmazie, Arbeitsgruppe Meißner
- Franzzell-Diffusionsversuche
- Isoliert perfundiertes Rindereuter
- Messung der Zytokinfreisetzung (Zellkultur und Gewebeschnitte)
- Präzisionseuterschnitte
- Präzisionslungenschnitte
- Proliferationsassays
- Vitalitätsassays
- Zellkultur von murinen dendritischen Zellen, Makrophagen und Osteoblasten zur Untersuchung der Biokompatibilität von Implantaten, Nanopartiklen und anderen Testsubstanzen
- Zellmigrationsassays
Ansprechpartnerin: Dr. Jessica Meißner (jessica.meissner(at)tiho-hannover.de; 0511-953-8723)
Institut für Physiologie und Zellbiologie, Arbeitsgruppe Zellbiologie
- In vitro-Assay auf Entwicklungsneurotoxizität an einer menschlichen neuronalen Vorläuferzelllinie (NT-2)
- In vitro-Assay auf Entwicklungsneurotoxizität an Heuschreckenembryonen
- Resazurin-basierte Zellviabilitätsassays mit Fluoreszenz-Mikroplattenleser (Tecan Infinite 200)
Ansprechpartner: PD Dr. Miachel Stern (michael.stern(at)tiho-hannover.de; 0511-856-7767)
Institut für Tierhygiene, Tierschutz und Nutztierethologie, Arbeitsgruppe Hiebl
- Testung der Hämokompatibilität von Substanzen
- Zytotoxizitätsprüfungen
- Mikrochirurgische Eingriffe an Versuchstieren
Ansprechpartner: Prof. Dr. Bernhard Hiebl (bernhard.hiebl(at)tiho-hannover.de; 0511-856-8958
