Institut für Parasitologie

AG Strube

: Prof. Dr. C. Strube, PhD

Prof. Dr. Christina Strube, PhD

Tel.: 0511-953 8796
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Forschung

Ein Forschungsschwerpunkt der Arbeitsgruppe umfasst die molekularen Mechanismen zur Biologie und Entwicklung sowie zur Bekämpfung des bovinen Lungenwurms Dictyocaulus viviparus. Folgende Forschungsthemen werden bearbeitet:

Transkriptomsequenzierung sämtlicher Stadien von D. viviparus

Genomsequenzierung

Stadienspezifische Transkriptanalysen

Genregulation der Hypobiose

Molekulare Charakterisierung, heterologe prokaryotische und eukaryotische Expression sowie Funktionsprüfung von Cysteinproteasen und anderen Lungenwurmgenen

Expression ausgewählter Gene in Pflanzen

in vitro-Kultivierung parasitischer Stadien

Subunitvakzinierung gegen D. viviparus

Als weiterer Forschungsaspekt ist die Evaluierung rekombinanter Antigene für verbesserte diagnostische Verfahren zu nennen. Solche rekombinanten wie auch native Antigene finden Einsatz in serologischen Untersuchungen von Blut und Milch zur Epidemiologie von Helmintheninfektionen bei Rindern. Eingebundene Projekte sind:

Immundiagnostik von D. viviparus-Infektionen und Antikörpertiterverlauf auf Individual- und Herdenebene

Entwicklung eines ELISA basierend auf rekombinanten Antigen zum Nachweis des großen Leberegels Fasciola hepatica

Regionale und bundesweite seroepidemiologische Untersuchungen zur Verbreitung von D. viviparus und F. hepatica

Verbreitung von D. viviparus im europäischen Ausland und Costa Rica

Veterinary Public Health ist der der zweite Forschungsschwerpunkt der Arbeitsgruppe. Dieser unterteilt sich in die Forschungsgebiete „Vektor-übertragene Krankheiten“ sowie "Zoonosen". Das Forschungsgebiet Vektor-übertragene Krankheiten (VBD, Vector-Borne Diseases) beinhaltet die Verbreitung und Übertragung von VBDs, insbesondere heimische durch Zecken übertragene Krankheiten. Hierbei ist der Fokus auf molekulare Nachweismethoden und die Epidemiologie der pathogenen Organismen gerichtet:

Quantitative real-time PCR basierend auf Oligonukleotidsonden (TaqMan-Minor Groove Binder) zur Identifizierung von Borrelien, Anaplasmen und Rickettsien in Zecken
Quantitative real-time PCR basierend auf interkalierenden Fluoreszenzfarbstoffen (SYBR Green) zur Identifizierung von Bartonellen in Zecken
Speziesdifferenzierung der pathogenen Mikroorganismen mittels RFLP, PCR und DNA-Sequenzierung
Epidemiologische Untersuchungen zur saisonalen und regionalen Häufigkeit von Borrelien-, Anaplasmen-, Rickettsien- und Bartonellen-infizierten Zecken in Hannover und Hamburg
Evaluierung der Pyrosequencing-Technologie zur Differenzierung von Rickettsienarten

Das Forschungsgebiet Zoonosen konzentriert sich auf Spulwürmer als vom Tier auf den Menschen übertragbare Krankheitserreger. Neben Studien zum zoonotischen Potenzial und dem Infektionsrisiko in städtischen, der Öffentlichkeit zugänglichen Bereichen werden molekulare Methoden der Erregeridentifizierung und -differenzierung etabliert. Im Mittelpunkt stehen dabei folgende Projekte:

Untersuchungen zur Kontamination von Kinderspielplätzen im Stadtgebiet Hannovers mit Toxocara-Eiern im jahreszeitlichen Verlauf
Pyrosequencing-Technologie zur Speziesidentifizierung von Spulwürmern
Neuropathologie der Toxocara cati-Infektion im paratenischen Wirt

Beruflicher Werdegang

1994 – 2000 Studium der Veterinärmedizin an der TiHo Hannover

2000 Approbation als Tierärztin

2000 – 2004 Promotionsstudium im PhD-Programm der TiHo Hannover

2003 – 2010 Wissenschaftliche Mitarbeiterin im Institut für Parasitologie, TiHo

Hannover

2004 Promotion zum Doctor of Philosophy (PhD) im Fachgebiet

Parasitologie

2008 Fachtierärztin für Parasitologie

2008 – 2010 Zertifikatskurs „Professionelle Lehre“

2010 Promotion zum Dr. med. vet.

ab 2010 Juniorprofessorin, TiHo Hannover

Stipendien und Auszeichnungen

Stipendien

Mai 2001- September 2003 Stipendiatin der Karl-Enigk-Stiftung

Auszeichnungen

2004 Förderpreis Tiermedizin der Kurt-Alten-Stiftung für eine herausragende PhD-These

Publikationen

I. Originalartikel

Ploeger H.W., Verbeek P.C., Dekkers C.W., Strube C., Van Engelen E., Uiterwijk M., Lam T.J., Holzhauer M. (2012): The value of a bulk-tank milk ELISA and individual serological and faecal examination for diagnosing (sub)clinical Dictyocaulus viviparus infection in dairy cows. Vet Parasitol 184, 168-179

Klewer, A.-M., Forbes, A., Schnieder, T., Strube, C. (2012): A survey on Dictyocaulus viviparus antibodies in bulk milk of dairy herds in Northern Germany. Prev Vet Med 103, 243-245

Laabs, E.M., Schnieder T., Strube C. (2012): Transcriptional differences between hypobiotic and non-hypobiotic preadult larvae of the bovine lungworm Dictyocaulus viviparus. Parasitol Res 110, 151-159

Strube, C., Schicht, S., Schnieder, T. (2011): Borrelia burgdorferi sensu lato and Rickettsia spp. infections in hard ticks (Ixodes ricinus) in the region of Hanover (Germany). Berl Munch Tierarztl Wochenschr 124, 512-517

Schicht, S., Junge, S., Schnieder, T., Strube, C. (2011): Prevalence of Anaplasma phagocytophilum and co-infection with Borrelia burgdorferi sensu lato in the hard tick Ixodes ricinus in the city of Hanover (Germany)

Vector Borne Zoonotic Dis 11, 1595-1597

Baker,R.H., Buschbaum, S., McKendrick, I.J., Matthews, J.B., Schnieder, T., Strube,C., Nisbet, A.J. (2011): GTP-Cyclohydrolase and development in Teladorsagia circumcincta and Dictyocaulus viviparus (Nematoda: Strongylida). Exp Parasitol, 128:309-317.

Mietze A., Strube C., Beyerbach M., Schnieder T., Goethe R. (2011): Occurrence of Bartonella henselae and Borrelia burgdorferi sensu lato co-infections in ticks collected from humans in Germany. Clin Microbiol Infect, 17:918-920

Cantacessi C., GasserR.B., Strube C., Schnieder T., Jex A.R., Hall R.S., Campbell B.E., Young N.D., Ranganathan S., Sternberg P.W., Mitreva M. (2011): Deep insights into Dictyocaulus viviparus transcriptomes provides unique prospects for new drug targets and disease intervention. Biotechnol Adv, 3:261-271

Franke D., Strube C., Epe C., Welz C., Schnieder T. (2011): Larval migration in PERL chambers as an in vitro model for percutaneous infection stimulates feeding in the canine hookworm Ancylostoma caninum. Parasit Vectors 4:7

Strube C., Montenegro V.M., Epe C., Eckelt E., Schnieder T. (2010): Establishment of a minor groove binder-probe based quantitative real time PCR to detect Borrelia burgdorferi sensu lato and differentiation of Borrelia spielmanii by ospA-specific conventional PCR. Parasit Vectors 3:69

Höglund J., Dahlström F., Engström A., Hessle A., Jakubek E.-B., Schnieder T., Strube C., Sollenberg S. (2010): Antibodies to major pasture borne helminth infections in bulk-tank milk samples from organic and nearby conventional dairy herds in south-central Sweden. Vet Parasitol 171:293-299

Strube C., Buschbaum S., Schnieder T. (2009): Molecular characterization and real time PCR transcriptional analysis of Dictyocaulus viviparus major sperm proteins. Parasitol Res 104:543-551.

Strube C., Buschbaum S., Samson-Himmelstjerna G.v., Schnieder T. (2009): Stage-dependent transcriptional changes and characterization of paramyosin of the bovine lungworm Dictyocaulus viviparus. Parasitol Int 58:334-340.

Bennema S., Vercruysse J., Claerebout E., Schnieder T., Strube C., Ducheyne E., Hendrickx G., Charlier J. (2009): The use of bulk tank milk ELISAs to assess the spatial distribution of Fasciola hepatica, Ostertagia ostertagi and Dictyocaulus viviparus in dairy cattle in Flanders (Belgium). Vet Parasitol 165:51-57.

Fiedor C., Strube C., Forbes A., Buschbaum S., Klewer A.-M., Samson-Himmelstjerna G.v., Schnieder T. (2009): Evaluation of a milk ELISA for the serodiagnosis of Dictyocaulus viviparus in dairy cows. Vet Parasitol 166:255-261.

Holtum C.v., Strube C., Schnieder T., Samson-Himmelstjerna G.v. (2008): Development and evaluation of a recombinant antigen-based ELISA for serodiagnosis of cattle lungworm. Vet Parasitol 151:218-226

Strube C., Buschbaum S., Wolken S., Schnieder T. (2008): Evaluation of reference genes for quantitative real-time PCR to investigate protein disulfide isomerase transcription pattern in the bovine lungworm Dictyocaulus viviparus. Gene 425:36-43.

RanganathanS., NagarajS.H., HuM., Strube C., Schnieder T., GasserR.B. (2007): A transcriptomic analysis of the adult stage of the bovine lungworm, Dictyocaulus viviparus. BMC Genomics 8:311.

Epe C., Behrens C., Strube C., Schnieder T. (2007): Evaluation of the transcription level of the protein disulfide isomerase in different stages from Ancylostoma caninum with a real-time PCR assay. Parasitol Res 101:1589-1595.

Strube C., Samson-Himmelstjerna G.v., Schnieder T. (2007): Genetic regulation of arrested development in nematodes: are age-1 and daf-gene orthologs present in Dictyocaulus viviparus? Parasitol Res 101:1111-1115.

Strube C., Schnieder T., Samson-Himmelstjerna G.v. (2007): Differential gene expression in hypobiosis-induced and non-induced third-stage larvae of the bovine lungworm Dictyocaulus viviparus. Int J Parasitol 37:221-231.

II. Monographien

Strube C. (2010): Charakterisierung der Vakzinekandidaten Major Sperm Protein und Paramyosin von Dictyocaulus viviparus.

These, Tierärztliche Hochschule Hannover, 2010

Strube C. (2004): Differentielle Gentranskription bei Hypobiose induzierten und nicht induzierten dritten Larven von Dictyocaulus viviparus.

PhD-Thesis, Tierärztliche Hochschule Hannover, 2004